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行业知识
DYCP - 44N型快速电泳仪使用教程
作者:六一生物
发布时间:2025-03-13 09:23:30
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在分子生物学实验进程中,DYCP - 44N型快速电泳仪凭借其高效分离生物大分子的特性,成为科研人员的得力助手。为帮助大家熟练掌握这款仪器的使用方法,本文将详细介绍DYCP - 44N型快速电泳仪使用教程。
一、实验前的精心筹备
1、仪器检查与准备
开启实验前,对DYCP - 44N型快速电泳仪进行全面检查。首先,查看仪器外观有无破损、裂缝,确保外壳完好。接着检查显示屏是否正常亮起,操作按键是否灵敏。同时,仔细检查电源线,查看是否存在磨损、断裂或插头松动的情况,若有问题,及时更换或修复,保障仪器能安全稳定通电。另外,要确保仪器放置在平稳、坚固且水平的实验台上,避免因台面不平整导致仪器在运行时晃动,影响电泳效果。
二、凝胶的精准制备
1. 凝胶类型与浓度选择:依据实验目的和待分离生物大分子的特性,挑选合适的凝胶。进行蛋白质电泳时,常用聚丙烯酰胺凝胶;核酸电泳则多采用琼脂糖凝胶。并且,要根据目标生物大分子的大小范围确定凝胶浓度。比如,分离小分子蛋白质,可选用浓度为12% - 15%的聚丙烯酰胺凝胶,其较小的孔径利于更好地分离小分子;对于大分子核酸,0.8% - 1%浓度的琼脂糖凝胶较为适宜。
2. 凝胶制备流程:严格按照配方准确称量各种试剂。以制备聚丙烯酰胺凝胶为例,精准称取丙烯酰胺、甲叉双丙烯酰胺、缓冲液、引发剂(如过硫酸铵)和催化剂(如TEMED)等。将称量好的试剂依次加入容器,使用磁力搅拌器充分搅拌,确保各成分均匀混合,但要注意避免产生过多气泡。气泡会在凝胶中形成空洞,干扰生物大分子的迁移路径,影响实验结果。若不慎产生气泡,可将凝胶溶液静置一段时间,让气泡自然逸出,或者使用吹风机的冷风档轻轻吹去表面气泡。随后,将凝胶溶液缓慢倒入制胶模具中,动作要平稳,避免凝胶溶液不均匀或出现分层现象。待凝胶完全凝固后,小心取出凝胶板,准备安装到电泳仪上。
三、样品的妥善处理
1. 样品提取与纯化:根据实验要求,从相应生物样本中提取目标生物大分子,并进行纯化。对于蛋白质样品,可利用柱层析、超滤等方法去除杂质和盐类;对于核酸样品,通过酚 - 氯仿抽提、乙醇沉淀等手段获取高纯度核酸。确保样品的纯度和完整性,这对实验结果的准确性至关重要。
2. 样品浓度测定与调整:使用分光光度计、酶标仪等仪器精确测定样品浓度。依据凝胶的检测灵敏度和实验要求,合理调整样品浓度。样品浓度过高,条带会出现过载现象,表现为条带变宽、拖尾甚至相互重叠,难以准确分辨各个条带;浓度过低,条带信号微弱,可能无法被检测到。一般来说,蛋白质样品浓度可控制在0.5 - 2mg/mL,DNA样品浓度在50 - 200ng/μL较为合适。在调整浓度时,使用与样品缓冲液相同的溶液进行稀释或浓缩,确保样品性质不受影响。
四、仪器操作的关键步骤
1、凝胶板的安装
打开DYCP - 44N型快速电泳仪的凝胶槽,将制备好的凝胶板小心放入凝胶槽中。安装过程中,要确保凝胶板与电极接触良好,位置摆放正确。避免凝胶板与其他部件碰撞,以免造成凝胶破裂或损坏,影响电泳效果。
2、缓冲液的添加
向电泳槽中加入适量缓冲液,缓冲液液位要符合仪器要求,既不能过低影响电场均匀性,也不能过高导致缓冲液溢出。缓冲液在电泳过程中维持稳定的pH值和离子强度,确保生物大分子能在电场中顺利迁移。选择合适的缓冲液,并确保其质量优良,无沉淀、变色等异常现象。常见的缓冲液有Tris - HCl缓冲液(用于蛋白质电泳)、TAE缓冲液(用于核酸电泳)等。
3、样品的上样
使用移液器吸取适量样品,将移液器枪头垂直缓慢插入凝胶孔底部,轻轻推动活塞,将样品缓慢注入凝胶孔中。上样时要注意避免产生气泡,且上样量要准确控制,按照实验需求和凝胶孔的承载能力进行上样。过多的上样量会导致条带过载,影响分离效果;过少的上样量则条带信号微弱,难以检测。
4、电泳参数的设置
根据实验类型和样品性质,在电泳仪操作界面上设置合适的电泳参数,包括电压、电流、电泳时间等。电压和电流大小直接影响生物大分子在凝胶中的迁移速度。电压过高,生物大分子迁移过快,条带扩散、模糊,分辨率降低;电压过低,电泳时间过长,同样会导致条带扩散,且可能因电场力不足,使一些生物大分子无法有效分离。在蛋白质SDS - PAGE电泳中,初始电压可设置在80 - 100V,待样品进入分离胶后,将电压提高到120 - 150V;在核酸电泳中,电压一般控制在5 - 10V/cm凝胶长度。电泳时间也需根据实验情况合理设置,时间过长,条带会过度迁移,出现扩散、拖尾;时间过短,生物大分子未能充分分离,条带分辨率低。一般来说,蛋白质SDS - PAGE电泳时间在1 - 2小时,核酸电泳时间在0.5 - 2小时之间,具体时间需根据样品性质、凝胶浓度等因素调整。
5、电泳的启动
确认所有参数设置无误后,点击电泳仪操作界面上的“启动”按钮,开始电泳实验。在电泳过程中,密切关注电泳仪运行状态,观察电压、电流显示是否稳定,仪器是否有异常噪音或发热现象。若发现异常,应立即停止电泳,排查故障原因。
五、实验后的规范处理
1、仪器的关闭
电泳实验结束后,先点击电泳仪操作界面上的“停止”按钮,然后关闭电泳仪电源开关。待仪器冷却后,拔掉电源线插头。
2、凝胶板的取出
小心打开电泳槽,取出凝胶板。注意不要损坏凝胶板,将凝胶板放置在合适容器中,用于后续染色、观察和分析。
3、电泳槽的清理
倒掉电泳槽内剩余缓冲液,用去离子水反复冲洗电泳槽,去除残留的缓冲液盐分、样品杂质等。若电泳槽内有顽固污渍,可使用软毛刷配合温和洗涤剂轻轻刷洗,但要注意避免刮伤电泳槽表面。刷洗完毕后,再用大量去离子水冲洗,确保电泳槽干净整洁,以备下次使用。
4、数据的记录与分析
对电泳结果进行拍照记录,并根据实验目的进行数据分析。例如,在蛋白质电泳中,通过与标准蛋白Marker对比,确定目标蛋白质分子量;在核酸电泳中,根据条带位置和亮度,分析核酸纯度、浓度以及片段大小等信息。
熟练掌握DYCP - 44N型快速电泳仪的使用方法,严格按照上述教程操作,能够有效提高实验效率,获得准确可靠的实验结果。希望广大科研工作者通过本文能更好地运用这款仪器,推动科研工作顺利开展。若您在使用过程中有任何疑问或经验分享,欢迎在评论区留言交流。
本文由北京六一生物编辑整理。
北京六一生物科技有限公司创建于1970年,50多年的历史,公司先后3次承担电泳装置产品国家、行业标准的起草、修订工作,2009年负责《基础电泳装置》国家标准已发布实施。专业生产生物化学与分子生物学检验分析仪器的科技型国有企业。
主要生产包含电泳仪、紫外分析仪、凝胶成像分析系统、酶标仪、化学发光成像系统、基因扩增仪等检验分析设备。
如果您对我们的产品有任何问题,欢迎您的来电:400 960 6117
我们的目标是:做生物化学分析仪器行业海尔
一、实验前的精心筹备
1、仪器检查与准备
开启实验前,对DYCP - 44N型快速电泳仪进行全面检查。首先,查看仪器外观有无破损、裂缝,确保外壳完好。接着检查显示屏是否正常亮起,操作按键是否灵敏。同时,仔细检查电源线,查看是否存在磨损、断裂或插头松动的情况,若有问题,及时更换或修复,保障仪器能安全稳定通电。另外,要确保仪器放置在平稳、坚固且水平的实验台上,避免因台面不平整导致仪器在运行时晃动,影响电泳效果。
二、凝胶的精准制备
1. 凝胶类型与浓度选择:依据实验目的和待分离生物大分子的特性,挑选合适的凝胶。进行蛋白质电泳时,常用聚丙烯酰胺凝胶;核酸电泳则多采用琼脂糖凝胶。并且,要根据目标生物大分子的大小范围确定凝胶浓度。比如,分离小分子蛋白质,可选用浓度为12% - 15%的聚丙烯酰胺凝胶,其较小的孔径利于更好地分离小分子;对于大分子核酸,0.8% - 1%浓度的琼脂糖凝胶较为适宜。
2. 凝胶制备流程:严格按照配方准确称量各种试剂。以制备聚丙烯酰胺凝胶为例,精准称取丙烯酰胺、甲叉双丙烯酰胺、缓冲液、引发剂(如过硫酸铵)和催化剂(如TEMED)等。将称量好的试剂依次加入容器,使用磁力搅拌器充分搅拌,确保各成分均匀混合,但要注意避免产生过多气泡。气泡会在凝胶中形成空洞,干扰生物大分子的迁移路径,影响实验结果。若不慎产生气泡,可将凝胶溶液静置一段时间,让气泡自然逸出,或者使用吹风机的冷风档轻轻吹去表面气泡。随后,将凝胶溶液缓慢倒入制胶模具中,动作要平稳,避免凝胶溶液不均匀或出现分层现象。待凝胶完全凝固后,小心取出凝胶板,准备安装到电泳仪上。
三、样品的妥善处理
1. 样品提取与纯化:根据实验要求,从相应生物样本中提取目标生物大分子,并进行纯化。对于蛋白质样品,可利用柱层析、超滤等方法去除杂质和盐类;对于核酸样品,通过酚 - 氯仿抽提、乙醇沉淀等手段获取高纯度核酸。确保样品的纯度和完整性,这对实验结果的准确性至关重要。
2. 样品浓度测定与调整:使用分光光度计、酶标仪等仪器精确测定样品浓度。依据凝胶的检测灵敏度和实验要求,合理调整样品浓度。样品浓度过高,条带会出现过载现象,表现为条带变宽、拖尾甚至相互重叠,难以准确分辨各个条带;浓度过低,条带信号微弱,可能无法被检测到。一般来说,蛋白质样品浓度可控制在0.5 - 2mg/mL,DNA样品浓度在50 - 200ng/μL较为合适。在调整浓度时,使用与样品缓冲液相同的溶液进行稀释或浓缩,确保样品性质不受影响。
四、仪器操作的关键步骤
1、凝胶板的安装
打开DYCP - 44N型快速电泳仪的凝胶槽,将制备好的凝胶板小心放入凝胶槽中。安装过程中,要确保凝胶板与电极接触良好,位置摆放正确。避免凝胶板与其他部件碰撞,以免造成凝胶破裂或损坏,影响电泳效果。
2、缓冲液的添加
向电泳槽中加入适量缓冲液,缓冲液液位要符合仪器要求,既不能过低影响电场均匀性,也不能过高导致缓冲液溢出。缓冲液在电泳过程中维持稳定的pH值和离子强度,确保生物大分子能在电场中顺利迁移。选择合适的缓冲液,并确保其质量优良,无沉淀、变色等异常现象。常见的缓冲液有Tris - HCl缓冲液(用于蛋白质电泳)、TAE缓冲液(用于核酸电泳)等。
3、样品的上样
使用移液器吸取适量样品,将移液器枪头垂直缓慢插入凝胶孔底部,轻轻推动活塞,将样品缓慢注入凝胶孔中。上样时要注意避免产生气泡,且上样量要准确控制,按照实验需求和凝胶孔的承载能力进行上样。过多的上样量会导致条带过载,影响分离效果;过少的上样量则条带信号微弱,难以检测。
4、电泳参数的设置
根据实验类型和样品性质,在电泳仪操作界面上设置合适的电泳参数,包括电压、电流、电泳时间等。电压和电流大小直接影响生物大分子在凝胶中的迁移速度。电压过高,生物大分子迁移过快,条带扩散、模糊,分辨率降低;电压过低,电泳时间过长,同样会导致条带扩散,且可能因电场力不足,使一些生物大分子无法有效分离。在蛋白质SDS - PAGE电泳中,初始电压可设置在80 - 100V,待样品进入分离胶后,将电压提高到120 - 150V;在核酸电泳中,电压一般控制在5 - 10V/cm凝胶长度。电泳时间也需根据实验情况合理设置,时间过长,条带会过度迁移,出现扩散、拖尾;时间过短,生物大分子未能充分分离,条带分辨率低。一般来说,蛋白质SDS - PAGE电泳时间在1 - 2小时,核酸电泳时间在0.5 - 2小时之间,具体时间需根据样品性质、凝胶浓度等因素调整。
5、电泳的启动
确认所有参数设置无误后,点击电泳仪操作界面上的“启动”按钮,开始电泳实验。在电泳过程中,密切关注电泳仪运行状态,观察电压、电流显示是否稳定,仪器是否有异常噪音或发热现象。若发现异常,应立即停止电泳,排查故障原因。
五、实验后的规范处理
1、仪器的关闭
电泳实验结束后,先点击电泳仪操作界面上的“停止”按钮,然后关闭电泳仪电源开关。待仪器冷却后,拔掉电源线插头。
2、凝胶板的取出
小心打开电泳槽,取出凝胶板。注意不要损坏凝胶板,将凝胶板放置在合适容器中,用于后续染色、观察和分析。
3、电泳槽的清理
倒掉电泳槽内剩余缓冲液,用去离子水反复冲洗电泳槽,去除残留的缓冲液盐分、样品杂质等。若电泳槽内有顽固污渍,可使用软毛刷配合温和洗涤剂轻轻刷洗,但要注意避免刮伤电泳槽表面。刷洗完毕后,再用大量去离子水冲洗,确保电泳槽干净整洁,以备下次使用。
4、数据的记录与分析
对电泳结果进行拍照记录,并根据实验目的进行数据分析。例如,在蛋白质电泳中,通过与标准蛋白Marker对比,确定目标蛋白质分子量;在核酸电泳中,根据条带位置和亮度,分析核酸纯度、浓度以及片段大小等信息。
熟练掌握DYCP - 44N型快速电泳仪的使用方法,严格按照上述教程操作,能够有效提高实验效率,获得准确可靠的实验结果。希望广大科研工作者通过本文能更好地运用这款仪器,推动科研工作顺利开展。若您在使用过程中有任何疑问或经验分享,欢迎在评论区留言交流。
本文由北京六一生物编辑整理。
北京六一生物科技有限公司创建于1970年,50多年的历史,公司先后3次承担电泳装置产品国家、行业标准的起草、修订工作,2009年负责《基础电泳装置》国家标准已发布实施。专业生产生物化学与分子生物学检验分析仪器的科技型国有企业。
主要生产包含电泳仪、紫外分析仪、凝胶成像分析系统、酶标仪、化学发光成像系统、基因扩增仪等检验分析设备。
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